Что будет если заморозить муху
Мухи в холодильнике: криоконсервация эмбрионов плодовой мушки
В кино, литературе и видеоиграх можно часто встретить вариации на тему криогенной заморозки, особенно, если сюжет разворачивается вокруг длительного межпланетного путешествия. Концепция заморозить что-то или кого-то до лучших времен не нова, но за последние годы она стала намного популярнее. Сейчас даже существуют специализированные учреждения, которые могут заморозить человека с неизлечимой болезнью, а потом разморозить его, когда будет изобретено лекарство. Правда, по законам живых людей замораживать нельзя. Успешно разморозить человека, который фактически переступил черту между жизнью и смертью, а потом еще и вылечить его недуг — задача для ученых будущего. Криоконсервация может использоваться не только для людей, но и для других организмов.
Плодовые мушки являются важным модельным организмом во многих отраслях науки, посему ученые из Миннесотского университета (США) разработали методику криоконсервации, позволяющую замораживать эмбрионы дрозофилы. Как работает данная методика, с какими трудностями ученым пришлось столкнуться, и насколько успешна созданная разработка? Ответы на эти вопросы мы найдем в докладе ученых. Поехали.
Основа исследования
Drosophila melanogaster, она же дрозофила или плодовая мушка, является без преувеличения уникальным организмом. Это назойливое насекомое, которое в летние месяцы с радостью становится соседом всех любителей свежих фруктов и овощей, играет важную роль во многих исследованиях.
Томас Морган (1866-1945)
В далеком 1909 году Томас Морган использовал плодовую мушку в качестве модельного организма в своих генетических экспериментах. Модельный организм, как это и предполагает сам термин, используются в качестве моделей в процессе изучения каких-либо процессов или явлений живой природы. Чтобы организм стал модельным, он должен соответствовать ряду требований: ученые должны знать о нем максимум, он должен быть простым в разведении, содержании, а время его развития должно быть минимальным.
Дрозофила подходит по всем этим параметрам и не только. Мушки быстро растут, быстро и массово размножаются, смена поколений также происходит быстро, а их эмбрионы прозрачны, что делает дрозофилу идеальным кандидатом для изучения эмбрионального развития животных.
Использование дрозофилы в качестве модельного организма позволило нам сделать множество важных открытий. Неудивительно, что в разных исследовательских лабораториях по всему миру хранится более 160 000 уникальных генотипов дрозофилы.
Внешний вид Drosophila takahashii.
На данный момент поддержание жизни дрозофил полностью ложится на плечи самих ученых, которые должны периодически переносить взрослых особей к свежему корму, постоянно мониторить условия среды обитания, следить за стерильностью (дабы избежать генетического загрязнения) и т.д. Это крайне трудоемкая задача, требующая немало сотрудников, оборудования и ресурсов.
Криоконсервация, напротив, должна быть гораздо проще и выгоднее, не говоря уже о сохранности самих дрозофил и их генетического материала.
Ранее, как заявляют ученые, уже были попытки разработать метод заморозки дрозофил, который испытывался на диком штамме (Oregon R). Однако разработку свернули из-за ее недостаточной воспроизводимости и сложности.
Если же вернуться ближе к теме исследования, а именно к заморозке эмбрионов дрозофилы, то основными проблемами являются введение криопротекторного агента (CPA от cryoprotectant agent), масштабируемость витрификации*, выживаемость эмбриона в зависимости от возраста и генетический фон, зависящий от штамма.
Витрификация* (стеклование) — переход жидкости в стеклообразное состояние при понижении температуры.
Проблема, связанная с CPA, проявляется на этапе дехорионации (Drosophila Egg Dechorionation), так как эмбрион становится непроницаем для криопротекторного агента ввиду воскового слоя и желточной мембраны. Если же CPA все же удастся ввести, то требуются большие скорости заморозки и разморозки для достижения криоконсервации посредством витрификации (стеклования). Однако этот процесс крайне сложно масштабировать, если речь идет о тысячах эмбрионов сразу. Не говоря уже о разнице в генетическом фоне разных штаммов дрозофилы, из-за которой заморозка может по-разному влиять на разные штаммы.
В рассматриваемом нами сегодня труде ученые попытались решить вышеописанные проблемы и достичь успешной криоконсервации эмбрионов разных штаммов дрозофилы.
Результаты исследования
Первый этап заморозки эмбриона это определение того, на какой стадии развития его лучше всего замораживать.
Изображение №1
Для этого использовалась имеющаяся «коллекция» дрозофил, названная М2 (1a). Особи в этой коллекции являются производными от штамма w[1118], а посему обладают прослеживаемым однонуклеотидным полиморфизмом на X-хромосоме и являются гомозиготными, жизнеспособными и фертильными.
Поскольку скорость эмбрионального развития сильно зависит от температуры, необходимо было постоянно мониторить возраст эмбрионов посредством строгого контроля времени инкубации при установленной температуре (например, 20.1 ± 0.05 °C). Также контролировались и морфологические особенности путем изучения внешнего вида кишечника (выглядит, как темные участки) эмбриона под микроскопом (кишечник выделен белыми линиями на 1b). При использовании препарирующего микроскопа кишечник приобретал молочный цвет (ниже на 1b).
С 19-ого по 24-ый час инкубации внешний вид кишечника меняется от структуры в форме сердца (19 часов инкубации) до набора из 3–4 полупараллельных полос, которые лежат перпендикулярно длинной оси эмбриона (20 часов), затем постепенно наклоняется (21–22 часа) и в конечном итоге принимает более вытянутую форму (23–24 часа).
После криоконсервации эмбрионов на разном этапе их развития была выполнена разморозка. Это позволило оценить степень выживаемости эмбрионов по скорости вылупления (от эмбрионов до личинок) и выживаемости взрослых особей (вылупившиеся личинки → окукливание → почти взрослые особи). В результате было установлено, что эмбрионы на 22-ом часу развития обеспечивают самую высокую выживаемость после криоконсервации (2a).
Изображение №2
Дело в том, что у эмбрионов в более старшем возрасте начинает формироваться непроницаемый слой кутикулы, препятствуя поглощение CPA, и поэтому выживаемость резко снижается.
Возраст мошек, используемых для сбора эмбрионов, также повлиял на результат криоконсервации. Выживаемость эмбрионов, полученных от более старых мух (9-12 дней), была значительно ниже, чем от более молодых (1-4 дня).
Далее была выполнена процедура стабилизации проницаемости эмбрионов посредством сетчатой корзины и смеси D-лимонена и гептана (сокращенно LH от D-limonene и heptane). Было установлено, что выдержки эмбрионов в LH растворе в течение 10 секунд вполне достаточно для удаления парафина и повышения проницаемости желточной мембраны, вызывая при этом минимальное повреждение. Далее эмбрионы окрашивались в красный цвет с помощью раствора родамина B, а затем с них удалялся восковой слой (1c).
В результате эмбрионы были полностью проницаемы для CPA, содержащего этиленгликоль (EG), пропиленгликоль (PG) и диметилсульфоксид (DMSO), но не для CPA, содержащего сахариды (сахароза, сортибол и трегалоза).
Чтобы ввести CPA в эмбрионы для последующей витрификации, монослой эмбрионов сначала подвергали воздействию проницаемой CPA с низкой концентрацией (13 мас.%). Более 90% эмбрионов сначала потеряли воду и сжались из-за более высокой внешней осмолярности*, за чем последовало набухание, когда CPA проникал внутрь (1c).
Осмолярность* (осмотическая концентрация) — суммарная концентрация всех растворенных частиц.
39 мас.%) при 4 °C. Обезвоженные эмбрионы стали плоские по форме и имели множество складок на поверхности.
Важно и то, что более высокая внутриэмбриональная концентрация CPA приводит к большей защите от летального образования льда во время последующего охлаждения и повторного нагревания, но также может привести к большей токсичности CPA, особенно при температурах выше нуля. Проанализировал выживаемость при различных концентрациях CPA, ученые установили, что 9 минут дегидратации в 39 мас.% этиленгликоля + 9 мас.% сорбита идеально подходит для успешной криоконсервации, так как снижает затраты реагентов и время выполнения самой процедуры.
После завершения всех подготовительных этапов ученые приступили непосредственно к заморозке эмбрионов. Для того чтобы криоконсервацию можно было использовать сразу на большом количестве эмбрионов, был разработан метод «криосетки» — нейлоновая сетка, прикрепленная к тонкому держателю из полистирола. Сетка размером 2х2 см может вместить около 1700 эмбрионов. Для каждого отдельного опытного захода заморозки использовалось от 200 до 600 эмбрионов.
Когда криосетка вдавливается в раствор CPA, в котором плавают эмбрионы, последние переносятся на сетку, а CPA поднимается (1a).
Изображение №3
Ученые отмечают, что удаление излишков раствора CPA с криосетки непосредственно перед стеклованием уменьшило общую массу на криосетке в 10 раз, тем самым повысив скорость охлаждения/нагревания и выживаемость эмбрионов после криоконсервации (3a—3d).
Другими словами, чем меньше лишнего раствора CPA остается на сетке, тем быстрее будет процесс заморозки и тем больше эмбрионов одновременно можно будет стекловать (3c).
Затем криосетку с эмбрионами быстро погружали в жидкий азот (LN2) для стеклования и последующего хранения. Выявить успешность стеклования можно было визуально: витрифицированные эмбрионы становились прозрачными, а кристаллизованные (т.е. стеклование прошло неудачно) становились белыми (1c).
Для сравнения был использован другой хладагент — SN2 (slush nitrogen). SN2 является более молодым вариантом LN2, который применялся в предыдущих исследованиях для стеклования эмбрионов. В рамках данного эксперимента SN2 показал более высокую скорость заморозки, но такую же скорость нагревания, как и LN2. Кроме того, показатели выживаемости в случае использования SN2 практически не отличались от LN2. По этой причине было решено продолжить использовать именно жидкий азот, так как SN2 гораздо сложнее производить (2c).
Факт того, что на криосетке было минимум раствора CPA, играет важную роль и в процессе нагревания. Предыдущие исследования показали, что скорость нагревания крайне важна для выживаемости эмбрионов. Правильное нагревание может даже спасти те эмбрионы, чья заморозка прошла с ошибками (например, образование льда).
Моделирование процесса нагревания показало, что при наличии CPA этот процесс протекает значительно медленнее. К примеру, скорость нагрева падает до 2.4 х 10 4 °C/мин при толщине слоя CPA в 250 мкм (2e—2f).
Если же удалить CPA, то моделирование показывает, что увеличение площади контакта эмбрионов с криосеткой увеличивает скорость начала вторичного нагревания, так как нейлоновая секта нагревается быстрее эмбрионов (3g—3h).
После успешного охлаждения и последующего нагревания необходимо было удалить CPA, присутствующий внутри эмбрионов. Для этого эмбрионы после нагревания подвергались воздействию 15 мас.% раствора сахарозы перед криобуфером (т.е. изотоническим солевым буфером*) для смягчения осмотического шока (повреждение /распад клеток).
Изотонический солевой буфер* состоит из хлорида натрия (NaCl), диспергированного в стерильной воде в концентрации, при которой объем остается в пространстве внеклеточной жидкости (ECF от extracellular fluid). Буфер называется изотоническим, так как он не меняет размер клеток.
Дополнительно был протестирован метод прямой загрузки эмбрионов в изотонический буфер (т.е. без раствора сахарозы). На удивление скорость вылупления таких эмбрионов была такой же, как и при использовании сахарозы, но выживаемость была ниже. Это, по мнению ученых, связано с желточной мембраной, которая помогает избежать чрезмерного набухания обезвоженных эмбрионов.
Результирующая выживаемость вылупившихся и взрослых особей после криоконсервации составила 52.9 ± 6.3 % и 31.8 ± 5.3 %, тогда как выживаемость без заморозки составляла 97% и 89%. Полученные результаты могут показаться слишком малыми, однако для такого рода процедур это весьма внушительные цифры.
В заключение ученые проверили эффективность данного метода криоконсервации на других 24 штаммах мошек (графики ниже).
Изображение №4
В результате было установлено, что использованные первоначально условия проведения процедуры заморозки/нагревания одинаково успешны для всех протестированных штаммов, хоть и были некоторые незначительные отличия.
В частности, для штамма S7 21-часовые эмбрионы обеспечивали более высокую выживаемость после криоконсервации, чем 22-часовые эмбрионы, из-за несколько более высокой скорости эмбрионального развития.
Для более детального ознакомления с нюансами исследования рекомендую заглянуть в доклад ученых и дополнительные материалы к нему.
Эпилог
В данном труде ученые продемонстрировали методику криоконсервации эмбрионов дрозофилы. Для достижения максимальной выживаемости эмбрионов после охлаждения/нагревания необходимо было учесть несколько важных аспектов и обойти некоторые трудности. К примеру, важную роль играл не только возраст эмбрионов (оптимальный: 22-ой час развития), которые будут подвержены охлаждению, но и возраст родителей (оптимальный: 1-4 дня). Для успешного введения в эмбрионы криопротекторного агента (CPA) была использована методика увеличения проницаемости, основанная на погружении эмбрионов в смесь D-лимонена и гептана. Эта процедура позволяла снять с них парафиновую оболочку и повысить проницаемость желточной мембраны. Но лишний CPA, остающийся на поверхности эмбрионов, мог бы усложнить процедуру охлаждения, потому его необходимо было удалить. Это было сделано посредством «криосетки» (нейлоновая сетка, прикрепленная к тонкому держателю из полистирола). Очистка эмбрионов от излишков CPA снижала общую массу примерно в 10 раз, тем самым ускоряя процесс заморозки, для которой использовался жидкий азот. А вот удаление CPA из эмбрионов на этапе нагревания происходило за счет погружения последних в раствор сахарозы, что значительно снижало вероятность осмотического шока.
На первый взгляд кажется, что вся эта процедура невероятно сложна. Однако авторы уверяют в обратном. Они даже проверили это, пригласив добровольцев (два старшеклассника), которых обучили проводить криоконсервацию самостоятельно. Новоявленные лаборанты крайне быстро освоились, а выживаемость эмбрионов, с которыми они работали, оставалась на уровне, описанном учеными в их труде.
Несмотря на свои малые габариты, дрозофилы играют крайне важную роль современной науке. Между человеком и дрозофилой много общего, особенно в аспекте генов. Изучение мутантов этого модельного организма позволяет выяснить, как подобного рода генетические изменения могут повлиять на человека, заявляют авторы исследования. Именно потому сохранение взрослых особей и эмбрионов дрозофил для будущих исследований играет столь важную роль.
Благодарю за внимание, оставайтесь любопытствующими и отличных всем выходных, ребята! 🙂
Немного рекламы
Воспользуйся поиском! Ты найдешь ответы на 99% своих вопросов.
Основное меню
Навигация
Сервисы
Сейчас на сайте
Заморозка кормовых насекомых
Назрел вопрос о заморозке кормовых насекомых, в частности дрозофил. Корм конечно отличный, но вот давать живых дрозофил в больших количествах муравьям довольно затруднительно. Выход: заморозить этих мушек. Вопрос: не уменьшается ли питательная ценность дрозофил при заморозке (изза превращения воды в лед клетки разрушаются)?
ps: если положить в холодильник, то через 5 минут после доставания дрозофилы оживают и большинство муравьи собирать не успевают.
Теоретичеки не должна, ведь денатурация происходит при нагревании, а при охлаждении нет. Только вот портиться будут замороженные быстрее после разморозки- тоесть если сразу не сьедят то быстрее высохнуть должны или загнить- ведь все разорвано в них и доступ микроорганизмам есть во все полости
** Если в процессе приготовления почувствуешь себя заправским шеф-поваром, при должной фантазии, можешь сразу приготовить туркменскую комбинацию (тараканы + дрозофилы + пыльца) Удачи!
2 Azerus
Александр, я редко пишу на форуме, в основном читаю и слежу за новостями, но мне кажется Вас становится много не в тему обсуждения, если так много экспрессии и желания самовыражаться, то может просто создадите тему в своем блоге, где и будете выплескивать свои мысли и прочее?*
* это не для обсуждения, просто мое личное мнение, которое не имеет смысла обсуждать.
Очень питательный, поверь, после него мураши будут срать расплодом (=
Сам так кормлю своих мессоров.
Ну так что? Каждый день по 100-200 яиц?
ведь денатурация происходит при нагревании, а при охлаждении нет.
Неправда. Разрушение веществ может происходить при охлаждении.
А что касается дрозофил, то не совсем понятна проблема. Для чего нужна заморозка? Для длительного сохранения или для обездвиживания мушек?
Я, лично, отлавливаю мушек в пробирку и кладу ее в морозилку. Через минут 15 или более вынимаю и засипаю мушек на арену. Последних достаточно быстро все виды уносят. Проблем никаких. На длительное замораживание не сохраняю, всегда свежемороженных даю.
Никогда не думал о длительном хранении мух в морозилке. Для кормления, одеваю полиэтиленовый пакет на банку открываю задвижку в крышке, жду пока набъются мухи в пакет. Закрываю задвижку. Пакет с мухами ложу в моорзилку минут на 5-7. потом насыпаю мороженые тушки на арену. Если мушки успевают оживать и разбегаться, значит их много даёшь. Попробуй давать по счёту, но почаще
проверено на кампанотусах и мессорах
едят замороженых насекомых хуже чем живых, и они быстрее портятся, но я достаточно долго кормил муравьём только ими(в смысле другого источника животного белка у них не было) и никаких негативных последствий не заметил
замороженых насекомых нужно давать чаще чем живых, потому что свежие храняться в муравейнике несколько дней и их постепенно поедают а мороженых выкидывают через день
морозить лутьше в маленьких герметичных емкостях, чтоб не размораживать лишний раз
герметичных потому что в современх холодильниках с системой типа ноуфрост продукты быстро пересыхают
А что касается дрозофил, то не совсем понятна проблема. Для чего нужна заморозка? Для длительного сохранения или для обездвиживания мушек?
Да, для длительного хранения. Дело в том, что возникают проблемы при отлове их из банки, где их около 1500 штук. Поэтому было бы очень удобно отловить излишек, и оставить в банке штук 200 для дальнейшего размножения. А замороженными постепенно кормить муравьиное население.
Мне кажется, что не стоит искать себе проблемы. Сверчков продают круглый год, а так же мучняка и зоофобуса.
Можно так же купить креветки. 1 кг стоит в пределах 5 долларов. 1кг даже с моими колониями мне хватало на несколько месяцев.
Креветки отличный корм, никакой головной боли. Достал сколько надо, кинул в кипяток на 3-5 минут, нарезал мелко и всё готово.
Истину глаголишь Azazel.
Купил на днях креветок для мессоров, закинул вариться, достал одну, попробовал и.
Как избавиться от мух: 9 проверенных способов и советы эксперта
Мухи живут в среднем около месяца, но если они живут в доме, то успевают за это время прилично навредить людям. Эти насекомые быстро размножаются и мешают жильцам квартиры. Вместе с экспертом разбираемся, чем опасны мухи, как избавиться от них народными, промышленными способами и когда пора прибегнуть к помощи профессионалов.
Материал прокомментировал Петр Фисенко, специалист-дезинфектор службы дезинфекции Dez_Hunter
Откуда берутся мухи
Мухи проникают в квартиру с улицы из подъезда или через вентиляционные отверстия и размножаются в ее пределах. Личинки насекомых нередко попадают в дома с испорченными овощами и фруктами.
Особенно актуальна проблема летом, когда на улице жарко и насекомые активно размножаются на органическом мусоре. Кстати, летом мухи вполне могут обойтись без посещения человеческих жилищ, но, попав внутрь, нередко не могут вылететь из помещения: из-за особенностей сетчатого строения глаз они не различают стекла.
Часто «нашествие» мух случается и осенью, когда температура на улице понижается, — они инстинктивно ищут место потеплее. На зиму насекомые впадают в спячку и вполне могут остаться в укромных местах квартиры, чтобы проснуться весной.
Чем опасны мухи
Помимо назойливого жужжания, мухи, как большинство насекомых, доставляют и более серьезные проблемы — это переносчики инфекционных заболеваний, в том числе таких, как туберкулез, тиф, холера и гельминтоз.
Насекомые питаются через длинный хоботок, предпочитая жидкую пищу. Попадая на кухню, они первым делом полетят к кружке с остывшим чаем, разлитому компоту или капле меда, оставшейся на столе. Бактерии быстро распространяются, попадая с мушиных лап на продукты и мусор. Если насекомое отложит яйца в еде, ею можно сильно отравиться. В частности, по этой причине врачи советуют избегать уличных перекусов, особенно в жаркое время года.
Мухи кусаются, и это может вызвать аллергию, сильное раздражение и зуд. Укусы насекомых нужно как можно скорее продезинфицировать, для этого подойдет любой из ставших привычными в обиходе санитайзеров.
Средства от мух
Ловушки
Самостоятельно сделанные ловушки должны содержать приманку — кусочки фруктов, сиропы, варенье. Параллельно с уничтожением мух, оказавшихся в помещении, установите сетки на окна, чтобы не залетали новые насекомые, привлеченные запахами из ловушки. Инструкция по изготовлению ловушки дается ниже.
Ленты
Есть много вариантов специальной липкой ленты для насекомых. Ее подвешивают на потолок или люстру, мухи садятся на ловушку, прилипают и погибают. Ленту можно сделать самостоятельно: нарежьте бумагу полосками, смажьте ее канифолью или смолой, в которых растворены касторовое или льняное масло, глицерин и сахар. Смесь нужно готовить на водяной бане.
Фумигаторы
Их лучше использовать в закрытых помещениях, из которых людям и домашним животным стоит уйти на некоторое время. Закройте окна и двери, вставьте фумигатор в розетку и выждите нужное время, которое указано в инструкции к средству. Затем помещение нужно проветрить, и желательны сетки на окнах, чтобы насекомые снова не залетели в обработанную квартиру.
Аэрозольные спреи
Инсектицидные средства крайне важно использовать вдали от продуктов питания и предметов личной гигиены. Убедитесь, что в обработанное помещение в течение пары часов не заходят домашние животные — для них химические спреи могут быть опасны. После использования проветрите помещение и протрите влажной тряпкой поверхности, на которых осело распыляемое вещество.
Эфирные масла
Как и многие насекомые, мухи чувствительны к запахам. Попробуйте зажечь свечи с цитронеллой или аромалампу с эфирными маслами лаванды, базилика, эвкалипта или мяты. Можно также добавить их в воду и обрызгать дверные косяки и подоконники из пульверизатора.
Растения
Некоторые травы обладают резким специфическим запахом, который отпугивает мух. Можно расставить в вазах или разложить в комнате с мухами ветки полыни, черемухи, бузины или крапивы. Подойдут как свежие, так и сушеные растения — некоторое время они тоже распространяют вокруг яркий аромат.
Темнота
Мух привлекает свет. Поэтому если затемнить помещение, оставив открытой только форточку, есть шанс, что насекомые вылетят. Но этот способ актуален, только если в комнате нет ничего, что могло бы их заинтересовать — напитков, еды, грязи и мусора. В противном случае мухи продолжат питаться и размножаться, не пытаясь покинуть квартиру.
Мухобойки и пылесос
Старый проверенный способ уничтожить часть насекомых — физическое воздействие, тут подойдут свернутая газета или имеющиеся в продаже мухобойки. Мух можно собрать пылесосом, но тогда содержимое мешка для сбора мусора должно быть немедленно выброшено. Но такие способы хороши, если в квартире одно-два насекомых или хозяевам хочется сбросить нервное напряжение.
Профессиональная дезинфекция
Если насекомых стало слишком много, а доступные способы опробованы и не помогают, имеет смысл обратиться к дезинсекторам. Специалисты проведут обработку помещений.
Как сделать ловушку для мух
Для этого пригодится пластиковая бутылка с отрезанным горлышком. Внутри должна находиться приманка, лучше всего что-нибудь сладкое. Затем свернутый конусом бумажный лист помещают внутрь бутылки острым краем, так, чтобы кончик не касался жидкости. Мухи заберутся внутрь, а взлететь назад через узкое отверстие не смогут.
Еще один вариант ловушки — с мыльной пеной. На дно банки наливают столовый уксус и несколько капель средства для мытья посуды. Сверху банку закрывают пищевой пленкой и делают отверстие, через которое мухи смогут проникнуть внутрь.
Петр Фисенко, специалист-дезинфектор службы дезинфекции Dez_Hunter:
— Можно ли использовать народные средства типа полыни и эфирных масел, если в квартире есть домашние животные?
— Стоит ли дополнительно обрабатывать поверхности, на которых были мухи?
— Мухи могут разносить опасные инфекции и заболевания. Именно поэтому в первую очередь нужно следить, чтобы в пищу не попали продукты питания, на которых насекомые могли оставить яйца. Нужно регулярно протирать содовым раствором поверхности обеденных столов, тщательно мыть фрукты и овощи перед употреблением, не оставлять в открытом доступе готовые блюда. Одежда и текстиль этих насекомых мало привлекают.
— Когда ситуация критична и нужно вызывать профессионалов?
— Если в квартиру через окно залетели две-три мухи — это не катастрофа, с ними можно справиться самостоятельно (например, с помощью липучей ленты или аэрозоля) и сильного вреда они не нанесут. Критичной ситуация становится, когда при отсутствии очевидного источника возникновения мух становится все больше и больше. Если у вас нет сырости в квартире, на окнах установлены москитные сетки, мусорокамера в подъезде находится в надлежащем санитарном состоянии, а мухи появляются регулярно и в больших количествах — это повод обратиться к специалистам. Как показывает практика, гнезда мух в квартире зачастую обнаруживаются в самых труднодоступных местах: в трещинах и щелях под подоконниками, в вентиляции, в кладовках. Только дезинфектор, имеющий достаточный опыт, сможет определить источник возникновения насекомых и грамотно устранить его.
— Как обрабатывают помещение профессионалы?
— Истребление мух в квартире проводится с помощью генератора холодного тумана. Это способ распыления инсектицида с воздухом, в виде аэрозоля, с частицами не более 100 микрон. В процессе обработки распространяется дымка или облако с мелкой дисперсией вещества по всему помещению, окутывая его и проникая в различные щели и труднодоступные места. Время обработки зависит от площади квартиры, в среднем это 30–40 минут. Минимум через три часа можно вернуться в квартиру и тщательно ее проветрить в течение часа. При соблюдении всех рекомендаций дезинфектора обработка не несет никакой опасности для людей и домашних животных.